In vitro germination of seeds and acclimatization of Macambira

  • Maria de Fátima Arrigoni-Blank Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil
  • Franciane dos Santos Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil
  • Ana Catarina Lima de Oliveira Instituto Federal de Sergipe, Campus Nossa Senhora da Glória, SE, Brasil
  • Arie Fitzgerald Blank Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil
  • Mariana de Souza Santos Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil
  • Thays Saynara Alves Menezes Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil

Abstract

The macambira is an ornamental plant that has a high degree of ecological importance in ecosystems. This study aimed to evaluate the in vitro germination of macambira due to different culture media and establish the best substrate for the acclimatization of micropropagated plants. For that were tested five treatments, 100, 75, 50, 25 and 0 of the MS medium. We estimated the percentage of germination and germination speed index (GSI). For acclimation were evaluated five combinations of substrates: coconut coir fiber: earthworm humus (2:1); coconut coir fiber: earthworm castings: sand (1:1:1) , (2:1:1) and (2:2:1), and vermiculite : earthworm humus (2:1). Was made to ANOVA and means were compared by Tukey test at 5%. There was no significant difference between the concentrations of MS salts as the percentage of germination. As for abortion, the treatment 100 % MS salts showed the worst results. The acclimatization of seedlings for the variables, number of leaves and dry weight of roots and shoots no significant difference. For the variable length of the longest root, coconut coir fiber: earthworm humus (2:1) and coconut coir fiber: earthworm castings: sand (2:1:1) and (2:2:1) showed the highest average and dry root the coconut coir fiber: earthworm castings: sand (1:1:1) and (2:2:1) provided the best results. The germination can be carried out in vitro in a medium containing only water and agar to acclimatization and must use the substrate coconut coir fiber: earthworm compost: sand (2:2:1).

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References

ARAGÃO, C. A.; DANTAS, B. F.; ALVES, E.; CATANEO, A. C.; CAVARIANI, C.; NAKAGAWA, J. Atividade aminolítica e qualidade fisiológica de sementes armazenadas de milho super doce tratadas com ácido giberélico. Revista Brasileira de Sementes, v. 25, n. 1, p. 43-48, 2003.

ARANDA-PERES, A. N; RODRIGUEZ A. P. M. Bromeliad. In: ARANDA-PERES, A. N.; RODRIGUEZ, A. P. M. (Eds.). Floriculture, Ornamental and Plant Biotechnology. 1. ed. Piracicaba: Global Science Books, 2006. p. 644-655.

ARRIGONI-BLANK, M. F.; COSTA, A. S.; FONSECA, V. O.; ALVES, P. B.; BLANK, A. F. Micropropagação, aclimatização, teor e composição química do óleo essencial de genótipos de hortelã japonesa. Revista Ciência Agronômica, v. 42, p. 175-184, 2011.

BASTOS, M. J. S. M; COSTA, M. A. P. de C.; SOUZA, F. V. Dom; BASTOS, L. P.; ROCHA, M. A. C. Da. Germinação in vitro de espécies de bromélias ameaçadas de extinção. Magistral, v. 4, p. 19-22, 2008.

BELLINTANI, M. C.; LIMA, C. O. De C.; BRITO A. L.; SANTANA, J. R. F. de; DORNELLES, A. L. Estabelecimento in vidro de Orthophytum mucugense e Neoregelia mucugensis, bromélias endêmicas da Chapada Diamantina, Bahia - Brasil. Revista Brasileira de Biociências, v. 5, n. S2, p. 1101-1103, 2007.

DUTRA, A. S.; TEÓFILO, E. M.; MEDEIROS FILHO, S. Germinação de sementes de macambira (Bromelia laciniosa Mart. ex Schult). Revista Caatinga (UFERSA. Impresso), v. 23, n. 2, p. 12-17, 2010.

DUTRA, L. F.; WENDLING, I.; BRONDANI, G. E. A micropropagação de eucalipto. Pesquisa Florestal Brasileira, v. 58, n. 1, p. 49-59, 2009.

FERREIRA, D. F. Sisvar: A computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, v. 35, n. 6, p.1039-1042, 2011.

LÉDO, A. S.; GOMES, K. K. P.; BARBOZA, S. B. S. C.; VIEIRA, G. S. S.; TUPINAMBÁ, E. A.; ARAGÃO, W. M. Cultivo in vitro de embriões zigóticos e aclimatação de plântulas de coqueiro-anão. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v. 42, n. 2, p.147-154, 2007.

LONE, A. B.; BARBOSA, C. M.; TAKAHASHI, L. S. A.; FARIA, R. T. Aclimatização de Cattleya (Orchidaceae), em substratos alternativos ao xaxim e ao esfagno. Acta Scientiarum. Agronomy, v. 30, n. 4, p. 465- 469, 2008.

LUTHER, H. E. An alphabetical list of Bromeliad binomials. 11. ed. Sarasota: Bromeliad Society Internacional, 2008. 110p.

MENDES, G. C.; SOARES, C. Q. G.; BRAGA, V. F.; PINTO, L. C.; SANTANA, R.; VICCINI, L. F.; PEIXOTO, P. H. P. Multiplicação in vitro de explantes de Billbergia distachia (Vellozo) MEZ (Bromeliaceae). Revista Brasileira de Biociências, v. 5, n. S2, p. 972-974, 2007.

MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobaco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v. 15, p. 473-497, 1962.

PINHEIRO, C. S. R.; MEDEIROS, D. N.; MACÊDO, C. E. C.; ALLOUFA, M. A. I. Germinação in vitro de mangabeira (Hancornia speciosa Gomez) em diferentes meios de cultura. Revista Brasileira de Fruticultura, v. 23, n. 2, p. 413-416, 2001.

RECH FILHO, A.; DAL VESCO, L. L.; NODARI, R. O.; LISCHKA, R. W.; MÜLLER, C. V.; GUERRA, M. P. Tissue culture for the conservation and mass propagation of Vriesea reitzii Leme and Costa, a bromeliad threatened of extinction from the Brazilian Atlantic Forest. Biodiversity and Conservation, v. 14, n. 8, p. 1799–1808, 2005.

REIS, E. S.; PINTO, J. E. B. P.; ROSADO, L. D. S.; CORRÊA, R. M. Influência do meio de cultura na germinação de sementes in vitro e taxa de multiplicação de Melissa officinalis L. Revista Ceres, v. 55, n. 03, p. 160-067, 2008.

ROCHA, E. L. J.; CARVALHO, A. C. P. P. de ; AZEVEDO, B. M.; MARINHO, A. B.; VIANA, T. V. A.; VASCONCELOS, D. V. Aclimatização de mudas micropropagadas de helicônia em ambiente protegido em função do tipo de substrato. Ciência e Agrotecnologia, v. 33, p. 1457-1462, 2009.

SANTA-ROSA, S.; SOUZA, F. V. D.; VIDAL, A. M.; LÉDO, C. A. S.; SANTANA, J. R. F. Micropropagation of the ornamental vulnerable bromeliads Aechmea blanchetiana and Aechmea distichantha. Horticultura Brasileira (Impresso), v. 1, n. 1p. 112-118, 2013.

SOUZA, A. V.; BERTONI, B. W.; FRANÇA, S. C.; PEREIRA, A. M. S. Micropropagação de Dioscorea multiflora Grised. Ciência e Agrotecnologia, v. 35, n. 1, p. 92-98, 2011.

VILLA, F. Micropropagação do maracujazeiro-do-sono. Revista Ceres, v. 57, n. 1, p.112-117, 2010.

WAGNER JÚNIOR, A.; COUTO, M.; FRANZON, R. C.; QUEZADA, A. C. Efeito de substratos na aclimatização de plantas micropropagadas do porta-enxerto de ameixeira Marianna 2624. Revista Ceres, v. 51, n. 295, p. 317-323, 2003.

WANDERLEY, M. G. L.; SHEPHERD, G. J.; MELHEM, TS-A.; GIULIETTE, A. M. Flora Fanerogâmica do Estado de São Paulo. São Paulo: Instituto de Botânica, v. 6, 2009. 311 p.

Published
2014-02-25
Section
Scientific Articles