In vitro germination of seeds and acclimatization of Macambira (Bromelia laciniosa Martius ex Schultes f.) seedlings

  • Maria de Fátima Arrigoni-Blank Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil.
  • Franciane dos Santos Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil.
  • Ana Catarina Lima de Oliveira Instituto Federal de Sergipe, Campus Nossa Senhora da Glória, SE, Brasil
  • Arie Fitzgerald Blank Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil.
  • Mariana de Souza Santos Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil.
  • Thays Saynara Alves Menezes Universidade Federal de Sergipe, Departamento de Engenharia Agronômica, Av. Marechal Rondon s/n, 49100-000, São Cristóvão, SE, Brasil.

Resumo

 

 The macambira is an ornamental plant that has a high degree of ecological importance. The objective in this research was to evaluate the in vitro germination of macambira in different culture media and establish the best substrate for the acclimatization of micropropagated plants. Five treatments were tested: 0, 25, 50, 75, and 100% salt of Murashige and Skoog (MS) medium. We calculated the percentage of germination and germination speed index (GSI). For testing acclimatization, five combinations of substrates were evaluated: coconut coir : earthworm castings (2:1); coconut coir : earthworm castings: sand (1:1:1, 2:1:1 and 2:2:1); and vermiculite : earthworm castings (2:1). There was no difference between the concentrations of MS salts based on the percentage of germination. For the GSI, the treatment 100% MS salts had the poorest results. There was no significant difference in the acclimatization of seedlings for the variables number of leaves and dried mass of roots and shoots. For the variable length of the longest root, coconut coir: earthworm castings (2:1) and coconut coir : earthworm castings : sand (2:1:1 and 2:2:1) had the highest averages, and for dried root mass, the coconut coir : earthworm castings : sand (1:1:1 and 2:2:1) provided the best results. Germination can be carried out in vitro in a medium containing only water and agar, and for acclimatization, the substrate coconut coir : earthworm castings : sand (2:2:1) should be used.

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Referências

ARAGÃO, C. A.; DANTAS, B. F.; ALVES, E.; CATANEO, A. C.; CAVARIANI, C.; NAKAGAWA, J. Atividade aminolítica e qualidade fisiológica de sementes armazenadas de milho super doce tratadas com ácido giberélico. Revista Brasileira de Sementes, v. 25, n. 1, p. 43-48, 2003.

ARANDA-PERES, A. N; RODRIGUEZ A. P. M. Bromeliad. In: ARANDA-PERES, A. N.; RODRIGUEZ, A. P. M. (Eds.). Floriculture, Ornamental and Plant Biotechnology. 1. ed. Piracicaba: Global Science Books, 2006. p. 644-655.

ARRIGONI-BLANK, M. F.; COSTA, A. S.; FONSECA, V. O.; ALVES, P. B.; BLANK, A. F. Micropropagação, aclimatização, teor e composição química do óleo essencial de genótipos de hortelã japonesa. Revista Ciência Agronômica, v. 42, p. 175-184, 2011.

BASTOS, M. J. S. M; COSTA, M. A. P. de C.; SOUZA, F. V. Dom; BASTOS, L. P.; ROCHA, M. A. C. Da. Germinação in vitro de espécies de bromélias ameaçadas de extinção. Magistral, v. 4, p. 19-22, 2008.

BELLINTANI, M. C.; LIMA, C. O. De C.; BRITO A. L.; SANTANA, J. R. F. de; DORNELLES, A. L. Estabelecimento in vidro de Orthophytum mucugense e Neoregelia mucugensis, bromélias endêmicas da Chapada Diamantina, Bahia - Brasil. Revista Brasileira de Biociências, v. 5, n. S2, p. 1101-1103, 2007.

DUTRA, A. S.; TEÓFILO, E. M.; MEDEIROS FILHO, S. Germinação de sementes de macambira (Bromelia laciniosa Mart. ex Schult). Revista Caatinga (UFERSA. Impresso), v. 23, n. 2, p. 12-17, 2010.

DUTRA, L. F.; WENDLING, I.; BRONDANI, G. E. A micropropagação de eucalipto. Pesquisa Florestal Brasileira, v. 58, n. 1, p. 49-59, 2009.

FERREIRA, D. F. Sisvar: A computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, v. 35, n. 6, p.1039-1042, 2011.

LÉDO, A. S.; GOMES, K. K. P.; BARBOZA, S. B. S. C.; VIEIRA, G. S. S.; TUPINAMBÁ, E. A.; ARAGÃO, W. M. Cultivo in vitro de embriões zigóticos e aclimatação de plântulas de coqueiro-anão. Pesquisa Agropecuária Brasileira, v. 42, n. 2, p.147-154, 2007.

LONE, A. B.; BARBOSA, C. M.; TAKAHASHI, L. S. A.; FARIA, R. T. Aclimatização de Cattleya (Orchidaceae), em substratos alternativos ao xaxim e ao esfagno. Acta Scientiarum. Agronomy, v. 30, n. 4, p. 465- 469, 2008.

LUTHER, H. E. An alphabetical list of Bromeliad binomials. 11. ed. Sarasota: Bromeliad Society Internacional, 2008. 110p.

MENDES, G. C.; SOARES, C. Q. G.; BRAGA, V. F.; PINTO, L. C.; SANTANA, R.; VICCINI, L. F.; PEIXOTO, P. H. P. Multiplicação in vitro de explantes de Billbergia distachia (Vellozo) MEZ (Bromeliaceae). Revista Brasileira de Biociências, v. 5, n. S2, p. 972-974, 2007.

MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobaco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v. 15, p. 473-497, 1962.

PINHEIRO, C. S. R.; MEDEIROS, D. N.; MACÊDO, C. E. C.; ALLOUFA, M. A. I. Germinação in vitro de mangabeira (Hancornia speciosa Gomez) em diferentes meios de cultura. Revista Brasileira de Fruticultura, v. 23, n. 2, p. 413-416, 2001.

RECH FILHO, A.; DAL VESCO, L. L.; NODARI, R. O.; LISCHKA, R. W.; MÜLLER, C. V.; GUERRA, M. P. Tissue culture for the conservation and mass propagation of Vriesea reitzii Leme and Costa, a bromeliad threatened of extinction from the Brazilian Atlantic Forest. Biodiversity and Conservation, v. 14, n. 8, p. 1799–1808, 2005.

REIS, E. S.; PINTO, J. E. B. P.; ROSADO, L. D. S.; CORRÊA, R. M. Influência do meio de cultura na germinação de sementes in vitro e taxa de multiplicação de Melissa officinalis L. Revista Ceres, v. 55, n. 03, p. 160-067, 2008.

ROCHA, E. L. J.; CARVALHO, A. C. P. P. de ; AZEVEDO, B. M.; MARINHO, A. B.; VIANA, T. V. A.; VASCONCELOS, D. V. Aclimatização de mudas micropropagadas de helicônia em ambiente protegido em função do tipo de substrato. Ciência e Agrotecnologia, v. 33, p. 1457-1462, 2009.

SANTA-ROSA, S.; SOUZA, F. V. D.; VIDAL, A. M.; LÉDO, C. A. S.; SANTANA, J. R. F. Micropropagation of the ornamental vulnerable bromeliads Aechmea blanchetiana and Aechmea distichantha. Horticultura Brasileira (Impresso), v. 1, n. 1p. 112-118, 2013.

SOUZA, A. V.; BERTONI, B. W.; FRANÇA, S. C.; PEREIRA, A. M. S. Micropropagação de Dioscorea multiflora Grised. Ciência e Agrotecnologia, v. 35, n. 1, p. 92-98, 2011.

VILLA, F. Micropropagação do maracujazeiro-do-sono. Revista Ceres, v. 57, n. 1, p.112-117, 2010.

WAGNER JÚNIOR, A.; COUTO, M.; FRANZON, R. C.; QUEZADA, A. C. Efeito de substratos na aclimatização de plantas micropropagadas do porta-enxerto de ameixeira Marianna 2624. Revista Ceres, v. 51, n. 295, p. 317-323, 2003.

WANDERLEY, M. G. L.; SHEPHERD, G. J.; MELHEM, TS-A.; GIULIETTE, A. M. Flora Fanerogâmica do Estado de São Paulo. São Paulo: Instituto de Botânica, v. 6, 2009. 311 p.

Publicado
2014-02-25
Seção
Artigos Científicos